借助新一代测序加速 CRISPR 基因组编辑

分析 CRISPR 脱靶效应,确认敲低等基因编辑,并研究这些编辑的功能影响。

CRISPR 基因编辑与新一代测序 (NGS)

CRISPR(规律成簇间隔短回文重复序列)基因组编辑是一种革命性的方法,其中的可编程RNA能将核酸酶(例如Cas9)靶向基因组中的特定位置。1,2 CRISPR-Cas9技术具有突变、沉默、诱导或替换遗传元件的功能,凭借其快速、简易以及精确的优势广泛应用于世界研究领域。

新一代测序(NGS)可用于基因组编辑研究工作流程的各个阶段,从利用全基因组测序分析 CRISPR 脱靶效应,到利用靶向测序确认 CRISPR 敲除及其他编辑。后续可使用甲基化分析和 RNA 测序基因表达谱分析等应用开展研究,以评估特定基因编辑的功能影响。

Gene Editing Research Review
基因编辑文献综述

查看近期采用Illumina NGS技术进行基因编辑的同行评审研究文献综述。

阅读综述

CRISPR-Cas9 技术已应用于基础与临床研究、药物开发、农业、环境等多个领域。研究表明,CRISPR 在治疗癌症、镰状细胞病、艾滋病、亨廷顿病、杜氏肌营养不良症等疾病方面具有潜在的未来应用价值。

CRISPR基因组编辑使研究人员能够快速、精准地创建转基因细胞系和动物模型。除了进行基因敲除和更具体的修饰外,研究人员还可使用CRISPR技术通过干扰(CRISPRi)或激活(CRISPRa)的方法调节基因表达,而不改变基因组序列(表)。

Types of CRISPR-Enabled Genome Edits

CRISPR 基因组编辑实验会产生混合细胞群体,其中仅有一小部分携带所需的编辑。研究人员需要确定哪些细胞具有所需的 CRISPR 敲除或靶向突变。当前用于评估编辑的方法包括裂解检测、PCR、Sanger 测序和新一代测序。查看相关表格以获取更多信息。

新一代测序是唯一能够在全部修饰范围内以高分辨率同时提供定性和定量信息、满足任何通量需求,并可用于监测脱靶效应的检测方法。基于新一代测序的靶向测序通过聚焦于待修饰区域,为确认 CRISPR 诱导的编辑提供了一种经济高效的解决方案。

深入了解靶向测序
Methods to Check Genome Editing On-Target Efficiency
基于 CRISPR 的干扰研究

Perturb‑Seq 是一种高通量技术,它将 CRISPR 基因干扰的精准性与单细胞 RNA 测序相结合,助力科研人员获取功能基因组学层面的研究结论。

了解更多关于 Perturb-Seq
CEO Francis deSouza Speaks at Aspen Ideas: Health

成功实施CRISP/Cas9技术应该包括识别和减少脱靶效应(即在预期靶点以外的位点进行非预期修饰)的策略。在基因组编辑实验中,经常使用评估RNA特异性和预测脱靶位点的计算方法。

在线工具和基于网络的算法是公开可用的(表)。然而,那些可能被预测算法忽视的脱靶位点则需要全基因组分析确认,例如基于新一代测序的全基因组测序(WGS)。8

了解更多关于全基因组测序(WGS)
Publicly Available Analysis Tools to Predict Off-Target Effects

用于检测 CRISPR 脱靶切割位点的全基因组新一代测序方法包括基于细胞的检测方法(在活细胞或固定细胞中)以及体外检测方法。每种分析方法各有优缺点;查看方法比较表以了解更多信息。

Unbiased Methods to Analyze
              Off-Target Effects

精选 CRISPR-Cas9 基因组编辑内容

 
Genomics podcast
基因组编辑与 CRISPR-Cas9:播客第 32 期

哥伦比亚大学的 Sam Sternberg 博士讨论了 CRISPR 和基因编辑的生物学原理及其影响。

立即收听
CRISPR-Cas9 Genome Engineering
CRISPR-Cas9:让基因组工程变得简单

因美纳科学事务团队总结了 CRISPR-Cas9 技术应用的关键出版物。

观看视频
Long Non-Coding RNAs
长链非编码 RNA

研究人员讨论了近期与癌症相关的 lncRNA 研究,从生物标志物发现到基于 CRISPR 和 siRNA 的癌症特异性 lncRNA 沉默方法。

阅读访谈
单细胞 RNA 测序

在 CRISPR 修饰后筛选细胞群体,以在数千个单个细胞中并行确定众多基因的调控影响。

RNA 测序

评估突变对转录组整体或基因/基因家族表达的影响。

ChIP-Seq

确定基因组编辑对 DNA-蛋白质结合的影响。

甲基化测序

研究突变对甲基化状态和染色质重塑的下游影响。

除了高分辨率的匹配和脱靶评估、功能验证以及对CRISPR敲除和编辑的评估外,新一代测序还可以在CRISPR基因组编辑工作流程的其他阶段整合。

在最初的设计阶段,一个基因位点或基因组的重测序(对于缺乏参考基因组的物种)有助于RNA选择。在克隆CRISPR-Cas9/向导RNA构建的过程中,对得到的质粒进行重测序,可以快速、高度可信地验证CRISPR的递送载体,特别是对于有大型质粒文库的高通量实验。

How NGS Fits into a CRISPR Genome Editing Workflow

特色产品

NextSeq 1000 & 2000 测序仪

突破性的桌面式测序仪让您在各类当前及新兴应用中,以更高效率、更少限制地探索新发现。

了解更多
Illumina Stranded mRNA Prep
Illumina Stranded mRNA Prep

一种简单、可扩展、经济高效的快速单日解决方案,用于分析编码转录组,起始量仅需低至 25 ng 的标准(未降解)RNA。

了解更多
Illumina Stranded Total RNA Prep with Ribo-Zero Plus
Illumina Stranded Total RNA Prep with Ribo-Zero Plus

使用多种样本快速制备文库,以突出的灵活性来研究编码和非编码转录组。

了解更多
农业基因组学
Agricultural Genomics

由于具有简易性和低成本的特点,CRISPR-Cas9技术可将农作物的基因编辑从大宗商品扩展到更广泛的重要农业品种。

了解更多
癌症研究
Cancer Research

CRISPR-Cas9技术快速简易,可实现新癌症模型开发,探索新免疫治疗靶点和策略。

了解更多
复杂疾病基因组学
Complex Disease Genomics

CRISPR-Cas9基因组编辑的精确性可实现人类复杂疾病的细胞和动物模型开发,达到研究疾病病理学的目的。

了解更多
细胞和分子生物学研究
Cellular and Molecular Biology Research

CRISPR-Cas9基因组编辑凭借快速简易以及低成本的特点,为基因敲除和转基因模型开发中的细胞和分子生物学应用带来了革命性的变化。

了解更多
NGS Technology
NGS技术

超高通量、可扩展性和速度,可获得前所未有的生物学知识。

探索NGS
Publication Reviews
文献综述

这些同行评审文献汇总强调了Illumina技术在推动科研进展中的重要作用。

阅读综述
参考文献
  1. Cong L, Ran F A, Cox D, et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science. 2013;339:819-823.
  2. Mali P, Yang L, Esvelt KM, et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 2013;339:823-826.
  3. Maruyama T, Dougan SK, Truttmann MC, Bilate AM, Ingram JR, Ploegh HL. Increasing the efficiency of precise genome editing with CRISPR-Cas9 by inhibition of nonhomologous end joining. Nat Biotechnol. 2015;33:538-542.
  4. Chu VT, Weber T, Wefers B, et al. Increasing the efficiency of homology-directed repair for CRISPR-Cas9-induced precise gene editing in mammalian cells. Nat Biotechnol. 2015;33:543-548.
  5. Qi LS, Larson MH, Gilbert LA, et al. Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression. Cell. 2013;152:1173-1183.
  6. Cheng AW, Wang H, Yang H, et al. Multiplexed activation of endogenous genes by CRISPR-on, an RNA-guided transcriptional activator system. Cell Res. 2013;23:1163-1171.
  7. Ran FA, Hsu PD, Wright J, Agarwala V, Scott DA, Zhang F. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nat Protoc. 2013;8:2281-2308.
  8. Tsai SQ, Joung JK. Defining and improving the genome-wide specificities of CRISPR-Cas9 nucleases. Nat Rev Genet. 2016;17:300-312.
  9. Gabriel R, Lombardo A, Arens A, et al. An unbiased genome-wide analysis of zinc-finger nuclease specificity. Nat Biotechnol. 2011;29:816-823.
  10. Tsai SQ, Zheng Z, Nguyen NT, et al. GUIDE-seq enables genome-wide profiling of off-target cleavage by CRISPR-Cas nucleases. Nat Biotechnol. 2015;33:187-197.
  11. Chiarle R, Zhang Y, Frock RL, et al. Genome-wide translocation sequencing reveals mechanisms of chromosome breaks and rearrangements in B cells. Cell. 2011;147:107-119.
  12. Crosetto N, Mitra A, Silva MJ, et al. Nucleotide-resolution DNA double-strand break mapping by next-generation sequencing. Nat Methods. 2013;10:361-365.
  13. Kim D, Kim S, Kim S, Park J, Kim JS. Genome-wide target specificities of CRISPR-Cas9 nucleases revealed by multiplex Digenome-seq. Genome Res. 2016;26:406-415.
  14. Tsai SQ, Nguyen NT, Malagon-Lopez J, Topkar VV, Aryee MJ, Joung JK. CIRCLE-seq: a highly sensitive in vitro screen for genome-wide CRISPR-Cas9 nuclease off-targets. Nat Methods. 2017;14:607-614.