Illumina Single Cell 3' RNA Prep
可扩展的RNA制备试剂盒,无需复杂工作流程或微流控技术,即可为单细胞实验提供高转录本和基因灵敏度。
Perturb-Seq是一种高通量方法,它将成簇规律间隔短回文重复序列(CRISPR)扰动的精确性与单细胞RNA测序(scRNA-Seq)相结合。该技术用于在单细胞分辨率下研究遗传扰动对全转录组的影响,探究基因调控网络(GRN)及细胞应答机制,从而为人类健康与疾病研究提供深入见解1。
过去,scRNA-Seq的成本和工作流程限制了Perturb-Seq的研究规模与通量。这些瓶颈尤其影响了对GRN的图谱构建 — 而这正是遗传变异与人类特征之间机制联系的关键。虽然单细胞转录组学能提供高分辨率的转录状态读数,但仅凭观察性数据难以推断因果调控关系2,3。
全基因组规模的Perturb-Seq筛查可通过引入靶向基因扰动来解决这些局限,帮助研究者鉴定基因功能、确立因果调控关系,并获得功能基因组层面的见解。为突破传统通量与工作流程的障碍,因美纳推出了新一代测序(NGS)解决方案,以支持高通量Perturb-Seq实验的实施。
高通量Perturb-Seq实验遵循一套工作流程:利用基于CRISPR的筛查技术,在细胞群体中同时敲除数个乃至数千个基因。常见的CRISPR筛查类型包括CRISPR干扰、用于基因敲除的CRISPR-Cas9以及CRISPR激活。在完成基于CRISPR的筛查后,细胞需经过进一步处理用于制备单细胞文库3。随后,文库将在诸如NovaSeq™ X系列等高通量测序仪上进行测序,并通过单细胞分析流程对数据进行分析。
传统的混池式CRISPR筛查在研究一维表型(包括细胞存活率和适应度读数)方面表现出色,而Perturb-Seq则能捕获单个细胞的全基因组表达谱。Perturb-Seq实验所获得的高维度转录组特征提供了更高的表型分辨率,并为绘制基因调控网络提供了可能3,4。
| 特征 | 传统混池式CRISPR筛查 | Perturb-Seq |
|---|---|---|
| 表型读数 | 低维度读数,基于少量预定义标志物,提供细胞活力(存活率)、增殖率(适应度)或荧光激活细胞分选(FACS)信息 | 高维度读数,scRNA-Seq通过捕获全转录组特征拓展了传统混池式CRISPR筛查的范围 |
| 数据分辨率 | 批量细胞群的平均值,掩盖了细胞间的异质性 | 单细胞分辨率,可提供转录状态的详细图谱分析 |
| 主要输出指标 | 单向导RNA(sgRNA)的富集或耗竭(例如活力或适应度评分) | 每次基因扰动引发的转录组变化及差异基因表达 |
| 主要应用 | 示例包括:发现原代细胞存活通路、必需基因以及耐药机制 | 示例包括:绘制基因GRN、识别潜在药物靶点,以及在转录组层面揭示上位相互作用 |
| 规模和通量概况 | 在一次批量运行中可扩展至大型全基因组筛查(约50–100K sgRNA) | 历史上多为靶向筛查,但随着新兴多组学和基于探针的工作流程发展,正逐步扩展至全基因组筛查能力 |
Illumina Single Cell 3' RNA Prep
可扩展的RNA制备试剂盒,无需复杂工作流程或微流控技术,即可为单细胞实验提供高转录本和基因灵敏度。
NovaSeq™ X系列高通量、量产级测序仪,使全基因组Perturb-Seq实验变得更易开展且更高效。
该工作流程优化了单细胞测序分析,既适用于Illumina Single Cell 3'RNA Prep,同时也支持第三方单细胞制备方案。
直观的多组学与多模态分析软件,可实现从样本到洞察的高效工作流程。
了解高通量基因组学、多组学研究及全基因组规模Perturb-Seq的技术进步、如何助力解析复杂的细胞通路 — 这些研究在过去曾难以想象;同时探索NovaSeq™ X测序仪如何加速基因组学深入信息的获取。
通过与采用人工智能和人类基因组学的制药合作伙伴协作,因美纳正在构建“十亿细胞图谱”(Billion Cell Atlas),旨在打造全球规模更大的全基因组基因扰动数据集。了解这一海量资源将如何覆盖多种细胞类型,并赋能研究者更深入地理解扰动预测、注释、细胞状态及药物反应建模。探索如何获取这一突破性数据集。
过去,成本和工作流程的限制使得scRNA-Seq难以大规模实施。Broad Clinical Labs首席运营官Sheila Dodge将分享如何将Perturb-Seq规模化,在5天内完成500万个细胞的分析,敬请聆听她的介绍。
两者均为将基因扰动与转录组读数相关联的单细胞CRISPR技术。CRISPR液滴测序(CROP-Seq)与Perturb-Seq的主要区别在于载体设计,以及测序过程中如何捕获和识别向导RNA。
早期的Perturb-Seq载体包含一个用于测序的间接条形码,但由于可能发生慢病毒重组错误,导致条形码与向导RNA分离,因此存在局限性。CROP-Seq通过将向导RNA与转录组直接关联,解决了这一问题,规避了潜在的重组错误。如今,原始的间接捕获方法已被淘汰,现代Perturb-Seq检测主要采用直接捕获载体5。
了解更多有关CRISPR基因组编辑中的NGS和scRNA-Seq™的优势信息。
传统上,基于液滴的单细胞工作流程及相关兼容CRISPR的单细胞RNA制备试剂盒为科研人员提供了Perturb-Seq选择方案。然而,scRNA-Seq的成本与工作流程限制,制约了这些实验的通量与规模6。此外,平台适用性取决于几个因素,包括筛查规模、测序深度要求、成本限制以及其他考量。
采用PIPseq(颗粒模板化即时分区测序)测序化学驱动scRNA-Seq文库制备,并结合NovaSeq™ X测序仪的高测序能力,有助于提升可扩展性与测序效率。
探索如何利用PIPseq测序化学开展单细胞RNA测序,借助可扩展、灵活的单细胞测序工作流程,揭示细胞层面的深入见解并发现新的生物标志物。
了解NovaSeq™ X Plus测序仪的双流动槽功能如何进一步提升效率,并拓展Perturb-Seq实验的发现潜力。
Perturb-Seq数据分析流程通常包含以下步骤:
1.比对与分配:将原始测序read处理成可用的量化数据,用以识别单细胞转录组,并确定对每个细胞进行编辑的特定CRISPR gRNA。
2.质量控制:进行严格过滤,去除多重细胞、空液滴以及负责编辑所需的特定CRISPR gRNA不明确的细胞。
3.表型分析:根据基因扰动对细胞进行分组,并进行差异基因表达和聚类分析,最终揭示每次编辑如何改变细胞功能7。
测序深度要求取决于多种因素,包括实验设计、转录组复杂性和扰动效率。对于Perturb-Seq实验,建议的测序深度范围为每细胞数万到超过10万条read,具体取决于实际需求。
可以,Perturb-Seq可以进行全基因组筛查。直接捕获单细胞测序化学和高通量测序仪技术的进步,有助于突破过去限制Perturb-Seq在基因组规模研究中应用的通量和成本瓶颈7。
请阅读用于基因编辑的Perturb-Seq,了解研究人员如何更高效地、以突破性的规模利用Perturb-Seq获得CRISPR-Cas9扰动细胞的单细胞分辨率数据。
了解NovaSeq™ X测序仪的全基因组测序能力。
使用NovaSeq™ X系列进行全基因组Perturb-Seq测序
一项高通量单细胞CRISPR筛查实验,可用于改变和检测约一百万个细胞中的基因表达谱。
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